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技術專欄

鐵死亡在肝纖維化治療中的作用機制
供稿:市場部發(fā)布時間:2023-07-20瀏覽量:718次

2012年,哥倫比亞大學Brent R. Stockwell團隊首次提出了一種名為鐵死亡的新型細胞程序性死亡方式。從此,鐵死亡相關研究熱潮逐年攀升。這期小編將帶領大家探究鐵死亡調控與肝纖維化的作用機制。

與細胞凋亡和細胞自噬不同,鐵死亡是一種依賴鐵的過程。鐵死亡的本質是谷胱甘肽(GSH)的耗竭和谷胱甘肽過氧化物酶4(GPX4)活性的降低。當谷胱甘肽過氧化物無法被GPX4催化還原,脂質過氧化物將無法代謝,從而破壞細胞膜的完整性,導致細胞死亡。鐵死亡在形態(tài)學、生物化學和遺傳學上有其獨特的表征。

● 形態(tài)特征

表現(xiàn)為線粒體體積縮小、雙層膜密度增加,線粒體嵴減少或消失,線粒體外膜破裂;核大小正常,無染色質聚集。

● 生化特征

鐵聚積,脂質過氧化,絲裂原活化蛋白酶(MAPKs)系統(tǒng)激活,胱氨酸-谷氨酸反向轉運體(System Xc-,由SLC7A11的SLC3A2組成的異二聚體)抑制胱氨酸攝取降低,谷胱甘肽(GSH)耗竭,NAPDH氧化增加,釋放花生四烯酸介質(如11-HETE和15-HETE)等。

●免疫特征

釋放損傷相關的分子模式(DAMPs),促進炎癥反應。

鐵代謝與鐵死亡

鐵是人體中不可或缺的微量元素,對正常的生理功能起著重要作用。鐵在細胞內參與多種生理過程,如氧的轉運、線粒體呼吸、DNA復制和細胞信號傳導。但鐵的生物利用度有限,因為它主要以Fe3+離子的形式存在,不溶于水溶液。過量的游離Fe2+離子可能引發(fā)氧化應激和脂質過氧化。細胞內外的鐵含量由調節(jié)系統(tǒng)控制,通過轉鐵蛋白導入和鐵轉運蛋白輸出。增加可變鐵池的鐵含量會增加氧化損傷和鐵死亡的敏感性。通過對鐵死亡的抑制或誘導調控,發(fā)現(xiàn)鐵死亡可能是肝纖維化等肝臟疾病中診斷、預防和治療的潛在靶標。

鐵死亡與肝纖維化

纖維化疾病由細胞經(jīng)歷持續(xù)慢性損傷的復雜病理過程發(fā)展而來,鐵死亡相關機制在纖維化疾病進展中發(fā)揮重要的調控作用。肝纖維化的主要病理特征是肝臟內HSC的活化與ECM過度沉積,匯管區(qū)大量纖維結締組織異常增生,進而破壞肝臟正常結構以及生理功能。因此,抑制HSC的活化及增殖,誘導HSC死亡是治療肝纖維化的有效方法。研究表明,HSC中儲存有大量的鐵離子,鐵死亡可以通過調控HSC內鐵離子含量以及脂質過氧化程度等影響肝纖維化的發(fā)展進程,因此靶向HSC鐵死亡可能成為治療肝纖維化的新策略[1](圖1)。

圖1:鐵死亡在肝纖維化中的相關調控途徑

01 RNA結合蛋白ZFP36/TTP和ELAVL1/HuR調控鐵死亡

Sui等[2]研究發(fā)現(xiàn)在大鼠肝纖維化模型中,異甘草酸鎂可誘導 HO-1上調,促進鐵和脂質過氧化物的積累,從而促進HSC鐵死亡的發(fā)生;而通過鐵死亡抑制劑ferrostatin-1或沉默HO-1則消除了異甘草酸鎂的抗纖維化作用。鋅指蛋白36(ZFP36 ring finger protein 36,ZFP36/TTP)和胚胎致死性異常視覺樣蛋白1(ELAV like RNA binding protein 1,ELAVL1/HuR) 在調控HSC鐵死亡中發(fā)揮重要作用,下調 ZFP36和上調ELAVL1可以促進索拉非尼(sorafenib)/erastin介導的HSC鐵死亡,減輕小鼠肝纖維化,進一步機制研究發(fā)現(xiàn)ZFP36/ELAVL1可能與下游靶基因結合,影響其mRNA穩(wěn)定性,從而調控HSC中儲鐵蛋白自噬,釋放出鐵離子,繼而通過芬頓反應產(chǎn)生大量ROS,促進HSC鐵死亡[3,4] 。

 

02 BRD7-P53-SLC25A28軸和Trf調控鐵死亡

Zhang等[5]研究發(fā)現(xiàn)采用CRISPR/cas9介導的BRD7敲除可減少HSC鐵死亡,而特異性BRD7質粒介導的BRD7過表達可促進HSC鐵死亡,進一步研究發(fā)現(xiàn)BRD7表達升高可通過直接與P53 N-末端轉激活域結合促進P53線粒體轉位,從而與下游SLC25A28相互作用形成復合物來介導鐵死亡的發(fā)生。研究者發(fā)現(xiàn)小鼠肝細胞特異性敲除Trf表現(xiàn)為肝臟非轉鐵蛋白結合鐵蓄積,加重高鐵飲食介導的肝纖維化,而同時特異性敲除小鼠肝細胞Trf和溶質載體家族39成員14(solute carrier family 39 member 14,SLC39A14) 可顯著減少肝臟鐵的積聚,改善了高鐵膳食或四氯化碳注射介導的肝纖維化,這些數(shù)據(jù)表明肝臟轉鐵蛋白在維持肝功能方面發(fā)揮保護作用,為預防鐵過載誘導的肝纖維化提供了一個潛在治療靶點[6]。

 

03 P62-Keap1-Nrf2信號通路調控鐵死亡

目前研究認為,鐵死亡的最終執(zhí)行機制是由于過量的脂質過氧化物累積引起質膜損傷,造成細胞鐵死亡的發(fā)生。Sun等[7]研究報道,沉默P62表達會增加erastin/sorafenib誘導的肝細胞癌(hepatocellular carcinoma,HCC) 細胞鐵死亡。此外,在HCC細胞移植瘤小鼠模型以及細胞實驗中發(fā)現(xiàn),核因子E2-相關因子2(nuclear factor erythroid 2-related factor 2,Nrf2) 敲低也表現(xiàn)出增強erastin/sorafenib抗HCC的作用。這些結果表明,P62-Kelch樣ECH關聯(lián)蛋白1(Kelch-like ECH-associating protein 1,Keap1)-Nrf2信號通路可能在鐵死亡中發(fā)揮重要作用。因此,Nrf2可能是參與鐵死亡及未來治療多種肝病的重要靶點。

01 靶向system Xc-誘導鐵死亡

目前研發(fā)發(fā)現(xiàn)鐵死亡誘導劑主要是通過靶向system Xc-、GSH、GPX4 以及鐵離子和ROS實現(xiàn)誘導鐵死亡,其中erastin是最早確定的一種特異性鐵死亡誘導劑,可靶向抑制system Xc-的活性,影響GSH的合成,促進多種細胞發(fā)生鐵死亡[8]。

 

02 靶向鐵離子和 ROS誘導鐵死亡

研究顯示,青蒿素和青蒿蓽茇酰胺等多種中藥可以通過提高ROS含量,從而影響鐵代謝來誘導鐵死亡,發(fā)揮抗肝癌的作用且毒性較低,是非常有前景的藥物[9]。FINO2 是一類具有1,2-二氧戊烷結構的plakinic酸D衍生物,可通過發(fā)生類芬頓反應,間接失活GPX4以及直接氧化PUFA的作用誘導細胞鐵死亡,且其在鐵水平高的腫瘤細胞中作用更強[10]

 

03 靶向GSH誘導鐵死亡

丁胱亞磺酰亞胺通過抑制GSH合成限速酶-谷氨酰半胱氨酸連接酶(gluta‐mate-cysteine ligase, GCL),降低GSH水平和GPX4活性來促進脂質過氧化,進而誘導多種癌細胞發(fā)生鐵死亡。順鉑可與GSH直接結合形成Pt(鉑)-GSH復合物,導致GSH和GXP4失活,從而促進鐵死亡。研究者進一步使用順鉑與erastin聯(lián)合作用于人肺癌細胞和人結腸癌細胞后發(fā)現(xiàn),聯(lián)合用藥呈現(xiàn)出顯著的協(xié)同抗腫瘤效應[11]。

 

04 靶向脂質過氧化抑制鐵死亡 

糙米提取物可以通過抑制鐵死亡來改善GPX4失活導致的脂質過氧化和細胞毒性[12];黃芩苷也可以通過抑制脂質過氧化,減少游離鐵蓄積而抑制鐵死亡,且其抑制作用明顯優(yōu)于一些典型的鐵死亡抑制劑[13]。

 

05 靶向 ACSL4抑制鐵死亡

噻唑烷二酮類藥物羅格列酮、吡格列酮和曲格列酮等可特異性抑制ACSL4表達,從而保護細胞免受 RSL3誘導的鐵死亡和脂質過氧化。其中,曲格列酮雖抑制ACSL4的效應較低,但可能由于其6-色原烷醇結構而具有固有的抗氧化活性,是噻唑烷二酮類藥物中抑制鐵死亡作用最強的[14]。一些研究者還將納米技術與鐵死亡研究相結合,利用納米材料抑制或誘發(fā)鐵死亡。因此,探索鐵死亡誘導劑和抑制劑的作用機制及開發(fā)新的靶向鐵死亡藥物對于治療肝纖維化具有重要意義。

 作為生命科學及醫(yī)學領域的蛋白抗體供應商,ELK biotechnology可為鐵死亡相關研究提供高品質的試劑,這里將鐵死亡部分產(chǎn)品列出來以便大家參考,詳情見下表:

【參考文獻】

[1] Anderson ER, Shah YM. Iron homeostasis in the liver [J]. Compr Physiol, 2013, 3: 315-330.

[2] Sui M, Jiang X, Chen J, et al. Magnesium isoglycyrrhizinate ameliorates liver fibrosis and hepatic stellate cell activation by regulating ferroptosis signaling pathway [J]. Biomed Pharmaco‐ ther, 2018, 106: 125-133.

[3] Zhang Z, Yao Z, Wang L, et al. Activation of ferritinophagy is required for the 

RNA-binding protein ELAVL1/HuR to regulate ferroptosis in hepatic stellate cells [J]. Autophagy, 2018, 14: 2083-2103.

[4] Zhang Z, Guo M, Li Y, et al. RNA-binding protein ZFP36/TTP protects against ferroptosis by regulating autophagy signaling pathway in hepatic stellate cells [J]. Autophagy, 2020, 16: 1482- 1505.

[5] Zhang Z, Guo M, Shen M, et al. The BRD7-P53-SLC25A28 axis regulates ferroptosis in hepatic stellate cells [J]. Redox Biol, 2020, 36: 101619.

[6] Yu Y, Jiang L, Wang H, et al. Hepatic transferrin plays a role in systemic iron homeostasis and liver ferroptosis [J]. Blood, 2020, 136: 726-739.

[7] Sun X, Ou Z, Chen R, et al. Activation of the p62-Keap1-NRF2 pathway protects against ferroptosis in hepatocellular carcinoma cells [J]. Hepatology, 2016, 63: 173-184.

[8] Dixon SJ, Lemberg KM, Lamprecht MR, et al. Ferroptosis: an iron-dependent form of nonapoptotic cell death [J]. Cell, 2012, 149: 1060-1072.

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[13] Xie Y, Song X, Sun X, et al. Identification of baicalein as a ferroptosis inhibitor by natural product library screening [J]. Biochen Biophys Res Commun, 2016, 473: 775-780.

[14] Doll S, Proneth B, Tyurina YY, et al. ACSL4 dictates ferroptosis sensitivity by shaping cellular lipid composition [J]. Nat Chem Biol, 2017, 13: 91-98.

[15] Chen Hao, Li Xiaofeng, Wang Hua. Research progress on the mechanism of iron death in regulating liver fibrosis [J]. Acta Pharmacologica Sinica, 2019,56(11):2916-2922.DOI:10.16438/J.0513-4870.2021-0959.

 

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